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液相芯片技术的原理与应用进展           
液相芯片技术的原理与应用进展
病原体和诊断感染性疾病

      应用液相芯片技术不仅可用免疫学方法检测机体感染病原体(包括病毒、细菌、真菌、寄生虫等)后产生的血清抗体,或直接检测病原体抗原,也可在基因水平上检测病原体的核酸,其用途十分广泛,如血清学诊断、病原体分型、疫苗效力评价、食品安全、环境监测、生物反恐等。这方面的研究报道很多,一般都将液相芯片和传统的金标准ELISA法进行检测结果比较。

    3.3.1  血清学诊断  检测抗病原体特异性抗体时一般采用间接法,即将病原体抗原(蛋白或多糖)交联在微球上,与样品中的相应抗体结合后,加入藻红蛋白标记的抗人IgG或IgM.

    Lukacs[5] 制备了抗原交联微球,不需洗涤步骤即可同时检测新生儿干血斑标本中的乙肝表面抗原、HIV1 p24、gp41抗体和丙型肝炎病毒NS3、NS4、核心抗原的抗体。Martins[6]在微球上交联A组链球菌的9种不同抗原(包括2种非特异性细胞外抗原、3种特异性抗原和4种与急性风湿热有关的组织抗原),定量分析患者感染A组链球菌后血清中的抗体反应。该方法仅需5 μl血清,90 min即完成分析,对链球菌溶血素O(SLO)、DNaseB的测定结果与传统方法100%相符,而且特异、灵敏,可检测浓度1 ng/ml以下的抗体。Kuller[7]直接在微球上交联全病毒抗原,用液相芯片技术检测恒河猴血浆中的抗病毒IgG抗体,以筛选未感染猴D型逆转录病毒、猴T淋巴细胞趋向性病毒、猴疱疹病毒1型、猴免疫缺陷病毒的SPF动物,并与ELISA比较检测灵敏性、特异性、交叉反应性和通量。结果表明,这两种方法的检测结果高度相关(相关系数 r 为0.98~0.99),液相芯片灵敏度更高,却又不影响其特异性(达100%),不产生交叉反应,而且由于该方法的假阳性率低,因而可减少需用Western确证的血清样品数量。在时间方面,用液相芯片同时检测样品中抗4种病毒抗体所需的时间与ELISA检测抗单种病毒抗体所需时间相等。因此液相芯片在灵敏度、稳定性、通量等检测性能方面较ELISA更胜一筹。此外还有用液相芯片技术检测鼠疫杆菌、炭疽杆菌、EB病毒、西尼罗河病毒、流感病毒、腺病毒、呼吸道合胞病毒、弓形体、小隐孢子虫等病原体特异性抗体的报道。

    3.3.2  病原体的检测和分型  人乳头瘤病毒(HPV)可导致宫颈癌,宫颈癌是妇女的第二大肿瘤,每年死亡人数近250 000人。HPV感染后患宫颈癌的危险性与病毒型别有关。Schmitt[8]采用液相芯片技术实现了在一个反应中同时对22种高危型和低危型生殖道HPV的基因分型,它是通过PCR以及与交联在微球上的型特异性探针杂交而完成。其批间变异系数<10%,最低检测限为100~800 pg PCR产物。该方法与反向线点杂交法对94个临床标本的检测结果相符,而灵敏度更高。Wallac[9]也通过类似方法同时高通量、快速检测45种生殖道HPV的基因型。由于液相芯片法对检测HPV混合感染非常有效,因此十分适合用于常规诊断、大规模流行病学调查、肿瘤筛查、监测治疗干预效果及疫苗试验中评价疫苗效果等。Borucki[10]在液相芯片技术中引入了DNA树形大分子(dendrimer)信号放大方法,只使用基因组DNA即对单核细胞增生性李斯特菌菌株进行了血清型鉴定,该方法不需PCR扩增,而且与多重PCR不同的是,它易于通过设计更多针对不同区域的探针序列而提高分型的分辨率。

      Straub[11]先采取自动化的免疫磁珠分离技术从样品中分离大肠杆菌O157:H7、沙门氏菌、志贺氏菌,然后通过标记引物进行多重PCR,最后用液相基因芯片同时检测上述三种细菌。结果表明其检测限为100个菌/种。

      用液相芯片技术进行病原体基因检测和分型鉴定可将核酸杂

交分析的特异性、可靠性及液相芯片技术的快速、灵敏性结合起来,PCR 1 h后即可完成鉴定,能精确区分相差一个核苷酸的不同种属细菌,灵敏度达到101~103基因组拷贝或<1 pg DNA。

    3.3.3  疫苗效力评价  在用于疫苗临床试验,尤其是评价多价疫苗接种后的免疫应答反应方面,液相芯片技术非常适合同时测定同一血清

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